Сравнительный анализ эффективности и безопасности методики интравитреальной инъекции офтальмологического газа у экспериментальных животных различных видов

Авторы

  • Ю.В. Кудрявцева ФГБОУ ВО« Кировский ГМУ» Минздрава России, Киров, Россия; КОГБУЗ «Кировская клиническая офтальмологическая больница», Киров, Россия
  • В.А. Козвонин ФГБОУ ВО« Кировский ГМУ» Минздрава России, Киров, Россия; ФГБОУ ВО« Вятский государственный университет», Киров, Россия
  • Е.Б. Дунаева ФГБОУ ВО« Кировский ГМУ» Минздрава России, Киров, Россия
  • М.В. Галашов КОГБУЗ «Кировская клиническая офтальмологическая больница», Киров, Россия
  • А.Н. Семенов КОГБУЗ «Кировская клиническая офтальмологическая больница», Киров, Россия
  • С.А. Вотинцева ФГБОУ ВО« Кировский ГМУ» Минздрава России, Киров, Россия; ФГБОУ ВО« Вятский государственный университет», Киров, Россия

Ключевые слова:

лабораторная методика, интравитреальное введение, офтальмологический газ, гексафторид серы, лабораторные животные, биомикроскопия, офтальмоскопия, В-сканирование глазного яблока

Аннотация

Статья описывает разработку экспериментальных методик с участием лабораторных животных для доклинической апробации лекарственных препаратов, а также изделий медицинского назначения в области офтальмологии.
Цель. Сравнить эффективность и безопасность методики интравитреальной инъекции офтальмологического газа у крыс и кроликов.
Материал и методы. Рассматриваются особенности интравитреального введения офтальмологического газа (гексафторид серы, SF6) с послеоперационным наблюдением в течение 10 суток и дальнейшим сравнительным анализом эффективности и безопасности у двух видов животных — крыс (10 шт.) и кроликов (5 шт.).
Результаты. У 9 из 10 крыс (9 глаз) оптические среды сохраняли прозрачность на всем протяжении наблюдения. На 1-е сутки в условиях медикаментозного мидриаза визуализировался пузырек газа в стекловидном теле. На 2-е
сутки у 70% крыс газ в витреальной полости не определялся, на 3-и сутки у всех животных витреальная полость — без признаков газа. У всех 5 кроликов (5 глаз) оптические среды сохраняли прозрачность на всем протяжении наблюдения. На 1-е сутки воспалительной реакции на вмешательство зафиксировано не было, в условиях медикаментозного мидриаза визуализировался пузырек газа в стекловидном теле. Длительность персистенции газа в витреальной полости кроликов была меньше указанной производителем, но больше, чем у крыс, и составила в среднем 6,6±0,5 суток.
Заключение. Представленная методика показала себя эффективным и безопасным способом доставки тампонирующего вещества в стекловидное тело экспериментального животного. Длительность нахождения газа в витреальной полости крыс была в 7 раз меньше, чем расчетная у человека, а у кроликов скорость элиминации отличалась в 2 раза. Данный фактор необходимо учитывать при планировании экспериментов.

Библиографические ссылки

1. Беляков В.И., Инюшкина Е.М. Лабораторные крысы: содержание, разведение, кормление и использование в биомедицинских исследованиях: учеб. пособие. Самара: Изд-во «Самарский университет»; 2008. 40 с. Belyakov VI, Inyushkina EM. Laboratory rats: housing, breeding, feeding and use in biomedical research. Samara: SamaraUniversity; 2008. 40 p. (In Russ.).

2. Абрашова Т.В., Гущин Я.А, Ковалева М.А., и др. Физиологические, биохимические и биометрические показатели нормы экспериментальных животных. СПб.: Изд-во «ЛЕМА»; 2013. 116 с. Abrashova TV, Gushchin YaA, Kovaleva MA, et al. Physiological, biochemical and biometric indicators of the norm of experimental animals. St. Petersburg: LEMA; 2013. 116 p. (In Russ.).

3. Разин М.П., Козвонин В.А., Дунаева Е.Б., Подпорина П.М. Экспериментальные модели, воспроизводимые на лабораторных животных в медико-биологическом центре биомоделирования Кировского ГМУ. Вятский медицинский вестник. 2024;3(83): 85–9. Razin MP, Kozvonin VA, Dunaeva EB, Podporina PM. Experimental animal models used in Kirov State Medical University medical and biological center for biomodeling. Vyatka Medical Bulletin. 2024;3(83):85–9. (In Russ.). doi: 10.24412/2220-7880-2024-385-89

4. Калатанова А.В., Кательникова А.Е., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Апробация модифицированной техники выполнения интравитреального введения лекарственных средств в глаз кролика. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. 2018;8(2): 109–14. Kalatanova AV, Katel’nikova AE, Makarova MN, Makarov VG. Approbation of a modified technique for intravitreal administration of drugs into the rabbit eye. The Bulletin of the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products. 2018;8(2): 109–14. (In Russ.). doi: 10.30895/1991-2919-20188-2-109-114

5. Dureau P, Bonnel S, Menasche M, et al. Quantitative analysis of intravitreal injections in the rat. Curr Eye Res. 2001;22(1): 74–7. doi: 10.1076/ceyr.22.1.74.6974

6. Chiu K, Chang RC, So KF Intravitreous injection for establishing ocular diseases model. J Vis Exp. 2007;(8): 313. doi: 10.3791/313

7. Guo Y, Gan D, Hu F, et al. Intravitreal injection of mitochondrial DNA induces cell damage and retinal dysfunction in rats. Biol Res. 2022;55(1): 22. doi: 10.1186/s40659-022-00390-6

8. Huang H, Kolibabka M, Eshwaran R, et al. Intravitreal injection of mesenchymal stem cells evokes retinal vascular damage in rats. FASEB J. 2019;33(12): 14668–79. doi: 10.1096/fj.201901500R

9. Matsumoto H, Miller JW, Vavvas DG. Retinal detachment model in rodents by subretinal injection of sodium hyaluronate. J Vis Exp. 2013;(79): 50660. doi:10.3791/50660

10. Рекомендация Коллегии ЕЭК от 14.11.2023 № 33 «О Руководстве по работе с лабораторными (экспериментальными) животными при проведении Доклинических (неклинических) исследований». Доступно по: https://www.alta.ru/ Ссылка активна на 14.10.2025. Recommendation of the EEC Board of 14.11.2023 No. 33 «On Guidelines for working with laboratory (experimental) animals during preclinical (non-clinical) studies». Available at: https://www.alta.ru/ Accessed: 14.10.2025. (In Russ.)

11. Офтальмологические газы (Arcad) ArceoleSF6. Доступно по: https://tradomed-invest.ru/Catalogue/Consumables/gaz/ Ссылка активна на 10.02.2026. Ophthalmic gases (Arcad) Arceole SF6. Available at: https://tradomed-invest.ru/Catalogue/Consumables/gaz/ Accessed: 10.02.2026. (In Russ.)

12. Гексафторид серы. Регистр лекарственных средств России. Доступно по: https://www.rlsnet.ru/active-substance/serygeksaftorid-3174. Ссылка активна на 10.02.2026. Sulfur hexafluoride. Register of Medicines of Russia. Available at: https://www.rlsnet.ru/active-substance/sery-geksaftorid-3174 Accessed: 10.02.2026. (In Russ.)

13.Гексафторид серы. Регистр лекарственных средств России. Доступно по: https://www.rlsnet.ru/active-substance/serygeksaftorid-3174. Ссылка активна на 10.02.2026. Sulfur hexafluoride. Register of Medicines of Russia. Available at: https://www.rlsnet.ru/activesubstance/sery-geksaftorid-3174 Accessed: 10.02.2026. (In Russ.)

14.Fernández-Ferreiro A, Luaces-Rodríguez A, Aguiar P, et al. Preclinical PET Study of Intravitreal Injections. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2017;58(7): 2843–51. doi: 10.1167/iovs.17-21812.

Загрузки

Опубликован

2026-05-03

Как цитировать

Кудрявцева, Ю., Козвонин, В., Дунаева, Е., Галашов, М., Семенов, А., & Вотинцева, С. (2026). Сравнительный анализ эффективности и безопасности методики интравитреальной инъекции офтальмологического газа у экспериментальных животных различных видов. Точка зрения. Восток–Запад, (1), 55–61. извлечено от http://east-west-journal.ru/index.php/east-west/article/view/635