Исследование решетчатой мембраны склеры при глаукоме

Авторы

  • Н.И. Курышева Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ ГНЦ ФМБЦ им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва; Федеральный биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва; Академия постдипломного образования ФГБУ ФНКЦ ФМБА России, Москва
  • В.Ю. Ким Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ ГНЦ ФМБЦ им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва; Федеральный биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва

Ключевые слова:

первичная открытоугольная глаукома, решетчатая мембрана склеры, глазной кровоток, оптическая когерентная томография, давление спинномозговой жидкости

Аннотация

Основные повреждения при глаукоме начинаются на уровне склеры, где аксоны ганглиозных клеток сетчатки, формирующие волокна зрительного нерва, и ретинальные сосуды проходят через сеть из соединительной ткани, называемой решетчатой мембраной склеры (РМС). Современные методы диагностики, такие как оптическая когерентная томография, особенно SD-OCT и Swep-OCT (SS-OCT), позволяют визуализировать РМС и определять кровоток в ней, открывая новые возможности диагностики глаукомы. В обзоре представлены сведения об анатомии и кровоснабжении
РМС, а также последние данные об исследовании указанных структур методами оптической когерентной томографии.
Ключевые слова: первичная открытоугольная глаукома, решетчатая мембрана склеры, глазной кровоток, оптическая когерентная томография, давление спинномозговой жидкости.

Библиографические ссылки

Allison K, Patel D, Alabi O. Epidemiology of Glaucoma: The Past, Present, and Predictions for the Future. Cureus. 2020;12(11): e11686. doi: 10.7759/cureus.11686

Kharmyssov C, Abdildin YG, Kostas KV. Optic nerve head damage relation to intracranial pressure and corneal properties of eye in glaucoma risk assessment. Med Biol Eng Comput. 2019;57(7): 1591–1603. doi: 10.1007/s11517-019-01983-2

Quigley HA, Earl M, Richard G, Maumenee AE. Optic Nerve Damage in Human Glaucoma. Arch Ophthalmol. 1981;99(4): 635-649. doi: 10.1001/archopht.1981.03930010635009

Luo H, Yang H, Gardiner SK, et al. Factors Influencing Central Lamina Cribrosa Depth: A Multicenter Study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2018;59(6): 2357–2370. doi: 10.1167/iovs.17-23456

Арутюнян Л.Л., Анисимова С.Ю., Морозова Ю.С., Анисимов С.И. Биометрические и морфометрические параметры решетчатой пластинки у пациентов с разными стадиями первичной открытоугольной глаукомы. Национальный журнал глаукома. 2021;20(3):11–19. [Arutyunyan LL, Anisimova SYu, Morozova YuS, Anisimov SI. Biometric and morphometric parameters of the lamina cribrosa in patients with different stages of primary openangle glaucoma. National Journal of Glaucoma. 2021;20(3): 11–19. (In Russ.)] doi: 10.25700/2078-4104-2021-20-3-11-19

Xiao H, Xu X-Y, Zhong Y-M, Liu X. Age related changes of the central lamina cribrosa thickness, depth and prelaminar tissue in healthy Chinese subjects. Int J Ophthalmol. 2018;11(11): 1842–1847. doi: 10.18240/ijo.2018.11.17

Курышева Н.И. Роль нарушений ретинальной микроциркуляции в прогрессировании глаукомной оптиконейропатии. Вестник офтальмологии. 2020;136(4): 57–65. [Kurysheva NI. The role of retinal microcirculation disorders in the progression of glaucomatous optic neuropathy. Vestnik Oftalmologii. 2020;136(4): 57–65. (In Russ.)] doi: 10.17116/ oftalma202013604157

Курышева Н.И. Монография. Гемоперфузия глаза и глаукома. Авторский тираж. 2014. [Kurysheva NI. Monography. Hemoperfusion of eye and glaucoma. Author’s edition. 2014. (In Russ.)]

Park H-YL, Shin DY, Jeon SJ, et al. Predicting the development of normal tension glaucoma and related risk factors in normal tension glaucoma suspects. Sci Rep. 2021;17;11(1): 16697. doi: 10.1038/s41598-021-95984-7

Lee SH, Kim T-W, Lee EJ, et al. Focal lamina cribrosa defects are not associated with steep lamina cribrosa curvature but with choroidal microvascular dropout. Sci Rep. 2020;10: 6761. doi: 10.1038/s41598-020-63681-6

Куренков В.В., Клюганов В.С., Кузнецова Н.В. и др. Визуализация решетчатой пластинки склеры с помощью оптической когерентной томографии. Возможности и перспективы диагностики. Обзор. Офтальмология. 2019;16(2): 159–162. [Kurenkov VV, Klyuganov VS, Kuznetsova NV, et al. Visualization of the Lamina Cribrosa of Sclera Using Optical Coherence Tomography. The Opportunities and Prospects for Diagnostics (Review). Ophthalmology in Russia. 2019;16(2): 159–162. (In Russ.)] doi: 10.18008/1816-5095-2019-2-159-162

Hernandez MR, Pena JDO, Selvidge JA, et al. Hydrostatic pressure stimulates synthesis of elastin in cultured optic nerve head astrocytes. Glia. 2000;32(2): 122–136. doi: 10.1002/1098-1136(200011)32:2<122::aid-glia20>3.0.co;2-j

Lee SH, Han JW, Lee EJ, et al. Cognitive Impairment and Lamina Cribrosa Thickness in Primary Open-Angle Glaucoma. Translational Vision Science & Technology. 2020;9: 17. doi: 10.1167/tvst.9.7.17

Jonas JB, Berenshtein E, Holbach L. Lamina Cribrosa Thickness and Spatial Relationships between Intraocular Space and Cerebrospinal Fluid Space in Highly Myopic Eyes. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2004;45(8): 2660–2665. doi: 10.1167/iovs.03-1363

Karimi A, Rahmati SM, Grytz RG, et al. Modeling the biomechanics of the lamina cribrosa microstructure in the human eye. Acta Biom. 2021;15(134): 357–378. doi: 10.1016/j.actbio.2021.07.010

Midgett D, Liu B, Ling YTT, et al. The Effects of Glaucoma on the Pressure-Induced Strain Response of the Human Lamina Cribrosa. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2020;61: 41. doi: 10.1167/iovs.61.4.41

Kim YW, Jeoung JW, Kim YK, Park KH. Clinical Implications of In Vivo Lamina Cribrosa Imaging in Glaucoma. J Glaucoma. 2017;26(9): 753–761. doi: 10.1097/IJG.0000000000000728

Киселева О.А., Иомдина Е.Н., Якубова Л.В., Хозиев Д.Д., Решетчатая пластинка склеры при глаукоме: биомеханические особенности и возможности их клинического котроля. Российский офтальмологический журнал. 2018;3: 76–83. [Kiseleva OA, Iomdina EN, Yakubova LV, Khoziev DD. Lamina cribrosa in glaucoma: biomechanical properties and possibilities of their clinical control. Russian ophthalmological journal. 2018;11(3): 76–83. (In Russ.)] doi: 10.21516/2072-0076- 2018-11-3-76-83

Liang Q, Wang L, Liu X. Mechanism study of trans-lamina cribrosa pressure difference correlated to optic neuropathy in individuals with glaucoma. Sci China Life Sci. 2020;63(1): 148–151. doi: 10.1007/s11427-018-9553-7

Moghimi S, Nekoozadeh S, Motamed-Gorji N, et al. Lamina cribrosa and choroid features and their relationship to stage of pseudoexfoliation glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2018;59: 5355–5365. doi: 10.1167/iovs.18-25035

Won HJ, Sung KR, Shin JW, et al. Comparison of Lamina Cribrosa Curvature in Pseudoexfoliation and Primary Open-Angle Glaucoma. Am J Ophthalmol. 2021;223: 1–8. doi: 10.1016/j. ajo.2020.09.028

Lee SH, Kim T-W, Lee EJ, et al. Lamina Cribrosa Curvature in Healthy Korean Eyes Sci Rep. 2019; 9: 1756. doi: 10.1038/s41598-018-38331-7

Lee SH, Kim TW, Lee EJ, et al. Diagnostic power of lamina cribrosa depth and curvature in glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2017; 58(2): 755–762. doi: 10.1167/iovs.16-20802

Ha A, Kim TJ, Girard MJA, et al. Baseline Lamina Cribrosa Curvature and Subsequent Visual Field Progression Rate in Primary Open-Angle Glaucoma. Ophthalmology. 2018;125(12): 1898–1906. doi: 10.1016/j.ophtha.2018.05.017

Kim GN, Kim JA, Kim MJ, et al. Comparison of lamina cribrosa morphology in normal tension glaucoma and autosomaldominant optic atrophy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2020;61(5): 9. doi: 10.1167/iovs.61.5.9

Kim JA, Kim TW, Lee EJ, et al. Comparison of lamina cribrosa morphology in eyes with ocular hypertension and normaltension glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. April 2020;61: 4. doi: 10.1167/iovs.61.4.4

Moghimi S, Zangwill LM, Manalastas PIC, et al. Association Between Lamina Cribrosa Defects and Progressive Retinal Nerve Fiber Layer Loss in Glaucoma. JAMA Ophthalmol. 2019;1;137(4): 425–433. doi: 10.1001/jamaophthalmol.2018.6941

Krzyżanowska-Berkowska P, Czajor K, Iskander DR. Associating the biomarkers of ocular blood flow with lamina cribrosa parameters in normotensive glaucoma suspects. Comparison to glaucoma patients and healthy controls. PLoS One. 2021;16(3): e0248851. doi: 10.1371/journal.pone.0248851

Lee EJ, Kim TW, Kim H, et al. Comparison between Lamina Cribrosa Depth and Curvature as a Predictor of Progressive Retinal Nerve Fiber Layer Thinning in Primary Open-Angle Glaucoma. Ophthalmol. Glaucoma. 2018;1(1): 44–51. doi: 10.1016/j.ogla.2018.05.007

Mirra S, Marfany G, Garcia-Fernàndez J. Under pressure: Cerebrospinal fluid contribution to the physiological homeostasis of the eye. Seminars in Cell & Developmental Biology. Semin Cell Dev Biol. 2020;102: 40–47. doi: 10.1016/j.semcdb.2019.11.003

Kishi Shoji. Impact of Swept Source Optical Coherence Tomography on Ophthalmology. December Taiwan Journal of Ophthalmology. 2015;6(2). doi: 10.1016/j.tjo.2015.09.002

Han JC, Cho SH, Sohn DY, Kee C. The characteristics of lamina cribrosa defects in myopic eyes with and without open-angle glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. February 2016;57: 486–494. doi: 10.1167/iovs.15-17722

Lee SH, Lee EJ, Kim JM, et al. Lamina Cribrosa Moves Anteriorly After Trabeculectomy in Myopic Eyes. Investigative Ophthalmology &

Visual Science. June 2020;61: 36. doi: 10.1167/iovs.61.6.36 34. Min HS, Zangwill LM, Manalastas PI, et al. Optical Coherence Tomography Angiography Vessel Density in Glaucomatous Eyes with Focal Lamina Cribrosa Defects. Ophthalmology. 2016;123(11): 2309–2317. doi: 10.1016/j.ophtha.2016.07.023

Ghahari E, Bowd C, Zangwill LM, et al. Macular Vessel Density in Glaucomatous Eyes with Focal Lamina Cribrosa Defects. J Glaucoma. 2018;27(4): 342–349. doi: 10.1097/ IJG.0000000000000922

Devalla SK, Chin KS, Mari JM, et al. A Deep Learning Approach to Digitally Stain Optical Coherence Tomography Images of the Optic Nerve Head. Inves Ophthalmol Vis Sci. 2018;59(1): 63–74. doi: 10.1167/iovs.17-22617

Загрузки

Опубликован

2022-08-22