Новые возможности экспресс-диагностики сложно культивируемых возбудителей инфекционных кератитов
Ключевые слова:
глазная поверхность, роговица, кератит, сканирующая электронная микроскопия, микробиом, бактерии, грибыАннотация
Широта этиологического спектра инфекционного кератита представляет серьезную проблему в диагностике данно-
го заболевания, так как стандартные методы оказываются неэффективными в выявлении сложно культивируемых
и атипичных возбудителей.
Цель. Представить клинические случаи, где предварительная успешная верификация сложно культивируемых возбудителей инфекционных кератитов была проведена на основе сканирующей электронной микроскопии (СЭМ) и лантоноидного контрастирования. Материал и методы. В статье описаны два случая инфекционного кератита у пациентов с особым статусом глазной поверхности, при которых стандартное бактериологическое исследование не позволило выявить этиологический агент.
Результаты. Оптимальный подход к лечению пациентов был выбран с учетом информации, полученной при проведении СЭМ с лантаноидным контрастированием.
Заключение. Представленные данные свидетельствуют о потенциале лантаноидного контрастирования и СЭМ в качестве дополнительного инструмента для идентификации атипичных возбудителей у пациентов с кератитом и сопутствующими заболеваниями глаза.
Библиографические ссылки
1. Ting DSJ, Ho CS, Deshmukh R, Said DG, Dua HS. Infectious keratitis: an update on epidemiology, causative microorganisms, risk factors, and antimicrobial resistance. Eye (Lond). 2021;35(4): 1084–1101. doi: 10.1038/s41433-020-01339-3
2. Novikov I, Subbot A, Turenok A, Mayanskiy N, Chebotar I. A rapid method of whole cell sample preparation for scanning electron microscopy using neodymium chloride. Micron. 2019;124: 102687. doi: 10.1016/j.micron.2019.102687
3. Новиков И.А., Суббот А.М., Труфанов С.В., Текеева Л.Ю. Новый взгляд на ультраструктуру комплекса клеточной адгезии эпителия роговицы. Точка зрения. Восток — Запад. 2017;1: 64–66. [Novikov IA, Subbot AM, Trufanov SV, Tekeeva LY. A new look on the ultrastructure of the cell adhesion complex of the corneal epithelium. Tochka zreniya. Vostok – Zapad. 2017;1: 64–66. (In Russ.)]
4. Аветисов С.Э., Труфанов С.В., Новиков И.А., Суббот А.М., Федоров А.А. Визуализация структуры эпителия роговицы методом сканирующей электронной микроскопии с лантаноидным контрастированием на основе Ca/Nd изоморфного замещения в Ca зависимых молекулярных системах. Вестник офтальмологии. 2016;132(6): 11–19. [Avetisov SÉ, Trufanov SV, Novikov IA, Subbot AM, Fedorov AA. SEM visualization of corneal epithelium through lanthanoid staining based on Ca/Nd isomorphous substitution in Ca dependent molecular systems. Vestnik Oftalmologii. 2016;132(6): 11–19. (In Russ.)] doi: 10.17116/oftalma2016132611–19
5. Халатян А.С., Пимонова О.И., Суббот А.М., Новиков И.А. Экспресс-метод визуализации микробиоты глазной поверхности. Современные технологии в офтальмологии. 2020;4: 264–265. [Khalatyan AS, Pimonova OI, Subbot AM, Novikov IA. Rapid test of eye surface microbiota visualization. Sovremennye tekhnologii v oftal’mologii. 2020;4: 264–265. (In Russ.)] doi: 10.25276/2312-4911-2020-4-264-265
6. Yartsev V, Zolotenkova G, Kasparova E, Kislov M, Rodina E, Novikov I, Atkova E. Ocular microbiome features in patients with chronic alcoholism. Abstractband DOG. 2022. Die Ophthalmologie. 2022;119(Suppl 3): 287. doi: 10.1007/s00347-022-01723-2
7. Кравчик М.В., Родина Е.С., Суббот А.М., Пимонова О.И., Фетцер Е.И., Новиков И.А. Визуализация нормальной микрофлоры глазной поверхности посредством импрессионной пробы с использованием сканирующего электронного микроскопа и лантаноидного контрастирования. Вестник офтальмологии. 2022;138(6): 5–13. [Kravchik MV, Rodina ES, Subbot AM, Pimonova OI, Fettser EI, Novikov IA. Visualization of normal ocular surface microflora via impression cytology sample using scanning electron microscopy with lanthanide contrasting. Vestnik oftal’mologii. 2022;138(6): 5–13. (In Russ.)] doi: 10.17116/oftalma20221380615
8. Методики клинических лабораторных исследований. Под ред. Меньшикова В.В. М.: Издательство Лабора; 2009. [Metodiki klinicheskih laboratornyh issledovanij. Pod red. Men’shikova VV. M.: Izdatel’stvo Labora; 2009. (In Russ.)]
9. Kivanc SA, Budak BA, Kivanc M, Cevik SG, Gullulu G, Ozmen AT, Yucel AA. The effects of sub-and above-MIC concentrations of vancomycin, linezolid and imipenem on Staphylococcus spp. isolated from ocular surface. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2016;57(12): 5401–5401.
10. Richter SS, Beekmann SE, Croco JL, Diekema DJ, Koontz FP, Pfaller MA, Doern GV. Minimizing the workup of blood culture contaminants: implementation and evaluation of a laboratorybased algorithm. J Clin Microbiol. 2002;40(7): 2437–2444. doi: 10.1128/JCM.40.7.2437-2444.2002
11. LaCroce SJ, Wilson MN, Romanowski JE, Newman JD, Jhanji V, Shanks RMQ, Kowalski RP. Moraxella nonliquefaciens and M. osloensis Are Important Moraxella Species That Cause Ocular Infections. Microorganisms. 2019;7: 163. doi: 10.3390/ microorganisms7060163
12. Cruzat A, Pavan-Langston D, Hamrah P. In vivo confocal microscopy of corneal nerves: analysis and clinical correlation. Seminars in ophthalmology. 2010;25(5-6): 171–177. doi: 10.3109/08820538.2010.518133
13. Galassi F, Giambene B, Corvi A, Falaschi G. Evaluation of ocular surface temperature and retrobulbar haemodynamics by infrared thermography and colour Doppler imaging in patients with glaucoma. British Journal of Ophthalmology. 2007;91(7): 878–881. doi: 10.1136/bjo.2007.114397
