Исследование микробиоты стекловидного тела у пациентов с диабетическим макулярным отеком (первые результаты)
Ключевые слова:
сахарный диабет, диабетический макулярный отек, стекловидное тело, микробиота, бактериологический методАннотация
Цель. Изучить микробиоту стекловидного тела у пациентов с диабетическим макулярным отеком (ДМО) бактериологическим методом.
Материал и методы. В исследование вошло 48 пациентов (49 глаз), проходивших лечение в Уфимском НИИ глазных болезней, которые были разделены на 2 группы. Средний возраст пациентов составил 62,4±4,5 года. Количество женщин – 25 (52%), мужчин – 23 (48%). В 1-ю группу исследования были включены 28 пациентов (29 глаз) с ДМО, из них у 20 пациентов (21 глаз) была непролиферативная стадия диабетической ретинопатии, у 8 пациентов – пролиферативная; 2-ю группу (группа сравнения) составили 20 пациентов (20 глаз) со свежей регматогенной отслойкой сетчатки и сквозными макулярными разрывами. У всех пациентов в стерильных условиях операционной был осуществлен забор стекловидного тела в объеме 400 мкл. Для определения состава микробиоты стекловидного тела применялся классический культуральный метод.
Результаты. В результате посева образцов стекловидного тела на питательные среды у 2 пациентов 1-й группы выявлен рост бактерий рода Bacillus (B. megaterium и B. pumilus) и еще у 1 пациента обнаружен рост Escherichia coli и Staphylococcus hominis. У пациентов 2-й группы (группа контроля) рост бактерий на питательных средах во всех случаях отсутствовал. Низкая частота обнаружения (всего у 3 пациентов) бактериальных изолятов в клиническом материале, возможно, связана с особенностями культивирования и необходимостью особых условий роста бактерий из стекловидного тела.
Заключение. Выявленная микробиота в группе пациентов с диабетической ретинопатией и наличием ДМО может указывать на нестерильность внутриглазных сред и присутствие определенного состава микробиоты, которая, не исключено, играет определенную патогенетическую роль в развитии макулярного отека.
Библиографические ссылки
1. Чаплин А.В., Ребриков Д.В., Болдырева М.Н. Микробиом человека. Вестник РГМУ. 2017;2: 5–14. [Chaplin AV, Rebrikov DV, Boldyreva MN. Mikrobiom cheloveka. Vestnik RGMU. 2017;2: 5–14. (In Russ.)]
2. Clarke G, Stilling RM, Kennedy PG, еt al. Minireview: Gut microbiota: The Neglected Endocrine Organ. Mol. Endocrinol. 2014;28(8): 1221 1238. doi: 10.1210/me.2014-1108
3. Rooks MG, Garret WS. Gut microbiota, metabolites and host immunity. Nat Rev Immunol. 2016;16(6): 341–352. doi: 10.1038/nri.2016.42
4. Canfora EE, Jocken JW, Blaak EE. Short – chain fatty acids in control of body weight and insulin sensitivity. Nat Rev Immunol. 2015;11(10): 577–591. doi: 10.1038/nrendo.2015.128
5. Rangasamy S, McGuire PG, Das A. Diabetic retinopathy and inflammation: Novel therapeutic targets. Middle East Afr J Ophthalmol. 2012;19(1): 52–59. doi: 10.4103/0974-9233.92116
6. Prashanthi GS, Jayasudha R, Chakravarthy SK, et al. Alterations in the Ocular Surface Fungal Microbiome in Fungal Keratitis Patients. Microorganisms. 2019;7: 309. doi: 10.3390/microorganisms7090309
7. Shivaji S, Jayasudha R, Prashanthi GS, et al. The Human Ocular Surface Fungal Microbiome. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2019;60: 451–459. doi: 10.1167/iovs.18-26076
8. Ozkan J, Willcox M, Wemheuer B, et al. Biogeography of the human ocular microbiota. Ocul Surf. 2019;17: 111–118. doi: 10.1016/j.jtos.2018.11.005
9. Kirstahler P, Bjerrum SS, Friis-Moller A, et al. Genomics-Based Identification of Microorganisms in Human Ocular Body Fluid. Sci Rep. 2018;8: 4126. doi: 10.1038/s41598-018-22416-4
10. Arunasri K, Mahesh M, Prashanthi GS, et al. Comparison of the Vitreous Fluid Bacterial Microbiomes between Individuals with Post Fever Retinitis and Healthy Controls. Microorganisms. 2020;8: 751. doi: 10.3390/microorganisms8050751
11. Vadodaria B, Ashtamkar S, Maheshgauri R, Motwani D, Sharma A. Analysis of conjunctival flora in diabetic and non-diabetic individuals and their antibiotic sensitivity pattern. IJCEO. 2020;6: 138–144. doi: 10.18231/j.ijceo.2020.030
12. Suwajanakorn O, Puangsricharern V, Kittipibul T, Chatsuwan T. Ocular surface microbiome in diabetes mellitus. Sci Rep. 2022;12(1): 21527. doi: 10.1038/s41598-022-25722-0
13. Ham B, Hwang HB, Jung SH, Chang S, Kang KD , Kwon MJ. Distribution and diversity of ocular microbial communities in diabetic patients compared with healthy subjects. Curr Eye Res. 2018;43: 314–324. doi: 10.1080/02713683.2017.1406528
14. Zhu X, Wei L, Rong X, et al. Conjunctival microbiota in patients with type II diabetes mellitus and influences of perioperative use of topical levofloxacin in ocular surgery. Front Med (Lausanne). 2021;8: 605639. doi: 10.3389/fmed.2021.605639
15. Kaldirim H, Yazgan S, Kirgiz A, Ozdemir B, Yilmaz A. Effect of Topical Antibiotic Prophylaxis on Conjunctival Flora and Antibiotic Resistance Following Intravitreal Injections in Patients with Type 2 Diabetes. Korean J Ophthalmol. 2020;34(4): 265–273. doi: 10.3341/kjo.2019.0144
16. Yamashita T, Doi N, Sakamoto T. Weak symptoms of bacterial endophthalmitis after a triamcinolone acetonide-assisted pars plana vitrectomy. Graefe’s Arch Clin Exp Ophthalmol. 2004;242: 679–681. doi: 10.1007/s00417-003-0834-2
17. Ehling-Schulz M, Lereclus D, Koehler TM. The Bacillus cereus Group: Bacillus Species with Pathogenic Potential. Microbiol Spectr. 2019;7:microbiolspec.GPP3-0032-2018. doi: 10.1128/microbiolspec.GPP3-0032-2018
18. Guzmán-Moreno J, García-Ortega LF, Torres-Saucedo L, Rivas- Noriega P, Ramírez-Santoyo RM, Sánchez-Calderón L, Quiroz-Serrano IN, Vidales-Rodríguez LE. Bacillus megaterium HgT21: a Promising Metal Multiresistant Plant Growth-Promoting Bacteria for Soil Biorestoration. Microbiol Spectr. 2022;10(5): e0065622. doi: 10.1128/spectrum.00656-22
19. Al-Abdullah AA, Al-Falah M, Al-Rashaed S, Khandekar R, Arevalo JF. Endophthalmitis caused by Rhizobium radiobacter after posterior chamber phakic intraocular lens implantation to correct myopia. J Refract Surg. 2015;31(8): 561–563. doi: 10.3928/1081597X-20150728-02
20. Rohowetz LJ, Yannuzzi NA, Gupta S, Patel NA, Miller D, Flynn HW. Endophthalmitis Caused by Agrobacterium radiobacter following Intravitreal Aflibercept for Diabetic Retinopathy. Case Rep Ophthalmol. 2020;11(1): 22–27. doi: 10.1159/000505227
21. Prasad R, Asare-BedikoB, Harbour A, FloydJ L, Chakraborty D, DuanY, Lamendella R, Wright J, Grant MB. Microbial Signatures in The Rodent Eyes With Retinal Dysfunction and Diabetic Retinopathy. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2022;63: 5. doi: 10.1167/iovs.63.1.5
22. Ilinskaya ON, Ulyanova VV, Yarullina DR, Gataullin IG. Secretome of Intestinal Bacilli: A Natural Guard against Pathologies. Front Microbiol. 2017;8: 1666. doi: 10.3389/fmicb.2017.01666
23. Muda R, Vayavari V, Subbiah D, Ishak H, Adnan A, Mohamed SO. Endogenous endophthalmitis: a 9-year retrospective study at a tertiary referral hospital in Malaysia. J Ophthalmic Inflamm Infect. 2018;8: 14. doi: 10.1186/s12348-018-0158-3
